【Insight 最新案例】Olink蛋白组学在非人类灵长类模型上治疗免疫反应

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研究背景

非人类灵长类动物(Non Human Primiates, NHP)是临床前和转化研究中的首选动物模型。将Olink 蛋白组学技术应用于非人类灵长类动物的研究中,有助于对关键医学问题进行更深入的了解。该研究中描述了Olink Explore覆盖的近3,000种蛋白质结果,揭示了剂量依赖性治疗免疫反应等显著生物信号。

https://insight.olink.com/data-stories/nonhuman-primates

钥孔海螺血蓝蛋白KLH(一种从钥孔海螺中提取的血蓝蛋白,常用于免疫学研究和制备抗原)对非人灵长类动物进行给药后,观察到多种蛋白质水平显著升高,特别是在免疫相关通路中,这代表了动物模型的炎症反应。每只动物的多个时间点样本也使我们能够监测治疗反应的动态变化。这些结果验证了Olink Explore对非人类灵长类动物样本有很好的兼容性。

实验设计

Olink 质量控制系统在 NHP 样本中显示出良好的技术性能。该研究中观察到了显著的生物信号,进一步说明了 Olink 技术与 NHP 样本兼容性。尽管样本量相对较小,但当前研究揭示了许多与预期生物学一致的明确信号。这也说明了在模型系统中精心设计的研究优势,通过控制诸如受试者环境等变量,可最小化实验噪声并增强统计功效。

该炎症研究包括四个治疗组的食蟹猴,每组四只动物。所有组的动物在时间点 1 和 4 之前接受了载体分子 KLH 给药。第 1 组作为对照组,仅接受 KLH 给药。第 2-4 实验组包括接受 KLH 和不同剂量的化合物治疗(因法规原因,无法披露透其名称)。在治疗前和治疗后6个时间点收集 EDTA 血浆样本,共 88 个样本。每个样本在 Olink Explore 平台上分析,每个样本测量近 3,000 个蛋白水平。

研究结果

● 差异表达蛋白

本研究的一个主要目标是识别在治疗前后发生变化的差异表达蛋白质尽管每个治疗组仅采样四只动物,但发现许多蛋白质在治疗后发生了显著变化。由于从每只动物身上都取了多个样本,在治疗前后共 55 天时间内,可得到治疗后非常详细的多时间点数据。多个治疗组还使我们能够研究治疗剂量的影响。为此,对每个蛋白质和治疗组的数据进行了线性混合模型 (LMM) 拟合,以时间点建模为固定效应。同时包括每只动物的随机效应,以考虑每只动物的 NPX 基线中的潜在差异。下图显示了在对多重检验进行校正后,每个治疗组中在任一时间点之间显示出显著变化的蛋白质数量。请注意,低剂量治疗组的动物在时间点 3、4 和 5 没有采样,这可能解释了为什么我们在该组中发现的显著变化较少。

通过将每个治疗后时间点与治疗前 NPX 水平进行比较来进一步细分。下图显示了在这些比较中显示出显著上调或下调的蛋白质数量(p 值已校正,以增加多重检验权重)。请注意,高剂量治疗组的动物在时间点 6 没有采样。

KLH免疫反应

载体分子KLH已知能触发显著初级免疫反应。如预期,在KLH处理后,炎症蛋白明显增加在近3,000蛋白质组分析中,免疫相关途径明显上调。本研究中的治疗引起了广泛的反应,总共有1,000蛋白质在至少一个治疗组中随时间改变(p<0.05)。为说明这些反应的生理学意义,我们首先将重点放在只接受载体分子KLH处理的对照组上。KLH来源于海洋软体动物,是一种含铜圆柱形分子,在人类和动物研究中广泛应用了40多年由于其具有多种糖和肽表位,已知能触发显著的免疫反应

图源: https://encyclopedia.pub/entry/history/show/10676

如下图所示,KLH治疗显示显著反应的486蛋白质中的4种蛋白质NPX水平(y轴)随时间点(x轴)的变化。每个点代表一个NPX值,线连接属于同一动物的观察值。垂直虚线表示KLH处理时间。该图显示了只有KLH处理的动物组(治疗组1)情况。

正如预期,促炎细胞因子IL6在两次治疗后迅速增加,表明KLH触发了炎症反应。在初始反应后,IL6水平逐渐下降,但在第二次治疗后显示出更强的反应。趋化因子CCL15在大多数动物中显示出与IL6相似的模式,而CCL11在第5个时间点之前始终保持高水平。相反,KLK13在时间点1和2之间对所有动物都有反应,但从时间点3开始恢复到治疗前水平,在第二次治疗后没有反应。这说明了纵向研究设计的强大功能,通过跟踪蛋白水平随时间的动态变化,可检测出不同类型的治疗反应。而如果我们只在治疗前和时间点6对动物进行采样,这些反应都可能不会被检测到。
 信号通路富集

鉴于信号数量众多(共近1,000种差异蛋白响应),解释本研究的所有结果并非易事。这是组学研究中常见挑战,帮助我们解释的方法之一是进行富集分析。富集方法关注具有共同生物学功能的基因和蛋白质组。研究中将使用基因集富集分析(GSEA)的方法来评估信号是否在分子签名数据库(MSigDB)提供的Reactome信号途径中富集。通过评估LMM结果,并对治疗前后NPX水平进行了对比,进一步获得了每个时间点对应Reactome途径的归一化富集分数(NES)及其p值。结果显示在以下热图中,颜色表示NES,数值与调整后的p值成反比。正NES表示与治疗前水平(时间点0)相比,途径中的蛋白质上调,负NES表示下调。

在第一个时间点,我们观察到免疫相关途径(如白细胞介素和TCR信号传导)的富集,符合预期的炎症反应。在第2和第3个时间点,富集现象变得不那么明显,只有在第4个时间点进行第二次治疗后,富集现象再次变得更强。这再次符合预期的炎症反应。在最后一个时间点,我们观察到更广泛的富集,如代谢途径,进一步揭示炎症后免疫反应的发生。

 
 化合物治疗后反应

接下来,我们将讨论进一步讨论化合物治疗组。组2-4的动物分别接受了测试化合物的低、中、高剂量。下图显示了LMM分析中4个最显著蛋白质动态变化。每一行对应一个蛋白质,每一列对应一个治疗组。对于这些蛋白质,在对照组和低剂量治疗组中,表达水平基本保持稳定。然而,在接受中等高剂量治疗的动物中,治疗反应非常显著。在组4中,反应尤为明显,一些蛋白质在治疗后平均变化约为4个NPX单位,大约相当于蛋白质浓度变化16倍

研究结论

该NHP研究中应用Olink技术对KLH和化合物治疗组数据进行了系统分析,并获得新颖见解。众所周知,KLH对动物模型会产生初级免疫反应,诚如预期,在接受KLH治疗的动物中会看到相应免疫反应。研究中尽管只采样了四只动物,但接受KLH治疗组显示出与预期一致的炎症反应,两次治疗后,白细胞介素细胞因子信号等途径均上调。这说明了Olink蛋白组检测技术与非人类灵长类动物样本的兼容性。最后,大量蛋白质对测试化合物有显著免疫反应,也进一步揭示了其作用方式的新见解。

 

 
 

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2024年1月26日 16:44
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